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IZON qEV尺寸排阻柰/div>
IZON qEV尺寸排阻柰/div>

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深圳市蓝星宇电子科技有限公司

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    IZON qEV 尺寸排阻柱,快?可靠地纯化细胞外囊泡

    功能9/span> Izon qEV 柱从生物样品中分离细胞外囊泡、/span>(qEV 尺寸排阻柱只用于研究目的。)
    适用 qEV 的样 1
    ? 血渄/span>
    ? 血浅/span>
    ? 唾液
    ? 尾/span>
    ? 细胞培养涱/span>
    选用 Izon qEV 柱的优势包括 2
    ? ?5 分钟的分离时闳/span>
    ? 极大程度地降低蛋白复合物产生和囊泡聚集的风险
    ? 可以使用生理等渗的缓冲溶涱/span>
    ? 是一种温和、快速的方法,可?*程度地维持囊泡的生物学功胼/span>
    ? 囊泡回收率为 50%或更髗/span>
    ? 蛋白的去除比>1000 倌/span>
    ? HDL 纯化>8 倌/span>
    说明?/span>
    样品体积 ? mL 500 L 为获?*纯度 EV 的优化体?/span>
    空隙体积 3.0 mL 0.25 mL
    操作温度 15 25 C
    流 :在 18C 时通常 0.8 1.2 mL/min
    分离尺寸 70 nm
    缓冲液: PBS
    床层体积 10 mL
    **可通过尺寸 1 m
    顶部和底部过滤尺寸: 20 m
    纯化 pH 范围 3-13
    清洗 pH 范围(CIP): 2-14
    保质 ? 个月(适当保存(/span>
    **次使用后的寿 :取决于使用方法与保存方泔/span>

    操作流程 3

    安全预防

    ? 当使 qEV 柱时采取适当的个人防护措施,比如实验服,手套和防护镜、/span>

    ? 柱子的抗菌溶液包 0.05% w/v 的叠氮化钠。大量的叠氮化钠有毒,所以应该避兌/span>皮肤和眼睛的直接接触、/span>

    ? 废弃缓冲液应妥善处理。叠氮化钠会在铜制管道中累积引起爆炸、/span>

    ? 生物样品可能有危险,当使 qEV 柱时+/span>请教实验室安全员有关样品安全操作的要点、/span>

    保存

    柱子保存在含有抑菌剂(例 20 %乙醇,或<0.05 % w/v 的叠氮化钠)的溶液中,存放于+4?8 C。抑菌剂可以在冲洗步骤时引入(见囉/span>泡收集后部分)、/span>

    使用剌/span>

    如下图所示:

    ? 将柱子固定,使液面水平(确保柱子垁/span>直)

    ? 不要移除底部滑动盕/span>

    ? 小心缓慢地移去顶盕/span>

    柱子的平衠/span>

    ? 移除底部滑动盖,并且使用至少 10 mL 洖/span>脱缓冲液(PBS)冲洗柱子。如果不是使?/span>PBS 洗脱,那么至少使 30 mL 洗脱缓冲涱/span>冲洗柱子。记 5 ml 缓冲液通过尺寸排阻柱通过的时间,这可用于判断何时需要清洗柱子、/span>

    ? 确认有充分的平衡时间使柱子温度介于操作温度范围内、/span>

    ? 不要使柱子变干。顶部的筛板必须保持湾/span>润。柱子变干会影响其功能、/span>

    ? 使用当天新配的过滤(0.2 m)缓冲液避免引入颗粒物污染、/span>

    ? 为了**的结果,建议购买 Izon Prep andReagent 试剂盒、/span>

    ? 如果在操作温度范围之外使用,可能会得到错误的结果、/span>

    样品的纯匕/span>

    一.样品的引入的应用

    1. 在柱子移除底部滑动盖之前,用移液枪移陣/span>筛板顶部的缓冲液、/span>

    2. 加入 500 L 样品、/span>

    3. 立即移去底部滑动盖、/span>

    4. 立即开始收 0.5 mL 馏分:/span>

    ? *开始的六个馏分?.0 mL)是空隙佒/span>积,不包含囊泡,通常无需分析、/span>

    ? 建议将空隙体积收集在同一个收集管?/span>来节约时间,并可避免 6 个单独的管子带来的测量误差、/span>

    5. ?后的样品刚刚进入柱子顶部筛板(与乊/span>相平),加入更多的缓冲液,但是不要高于顶部筛 2 mL、/span>

    ? 等待直到*后一滴样品刚刚进入柱子顶部筛板,避免样品稀释、/span>

    ? 样品馏分收集

    当依据操作流程使 qEV 柱时,EVs 大多数洗脱于馏分 7? 9 中,去除了~99.8 %的蛋白;

    大于 10 的馏分包含更多的蛋白和更少的囉/span>泡,不建议分析。为了得到更高的 EV 回收率,馏分可以合并起来,但是,合并馏分会稀 EVs 的浓度、/span>

    方法 A 得到**的纯度和浓度

    不同的样品会得到不同的洗脱峰形,因此建议预先测量 EV 浓度并对所有馏分(7 - 11)进衋/span>蛋白纯化、/span>

    1. 空隙体积之后立即收集 3 个囊泡馏分,毎/span>个馏 500 L(馏 7? 9)、/span>

    2. 测量每个馏分 EV 浓度(使 IzonqNano)和蛋白纯度、/span>

    ? 为了得到高浓度囊泡,使用** EV 浒/span>度的馏分(通常 7 8)。注意:合并馏分会稀 EV 浓度、/span>

    ? 为了得到高纯度囊泡,使用*低蛋白浓度的馏分、/span>

    方法 B 一般使用操佛/span>

    空隙体积之后立即收集一个囊泡馏分,1500L。为了减少蛋白污染,建议只收 1000 L、/span>

    ? 囊泡收集名/span>

    当收集完囊泡馏分之后,用至少 10 mL 缓冲涱/span>冲洗柱子,并按照《保存》部分的要求保存柰/span>子。记 5 ml 缓冲液通过尺寸流过尺寸排阻柰/span>所需要的时间,这对于检测何时清洗柱子很月/span>用。流速的改变可能暗示柱子被堵住或被污染、/span>

    qEV 柱的维护

    再次使用

    如何检测柱子何时被污染并需要清洁;

    ? 流速相比初始流速开始变缓。因此建议测量初始冲洗流速(和/或空隙体积)作为对比、/span>

    ? 如果较先前相似的样品来说回收率明显下降,那么期望 EVs 产率也相应下降。如果是这样,使 Izon CPC100 校正颗粒(稀释于 PBS 缓冲溶液中),收集馏分并使用qNano 测量至少 2000 个数。两个峰值馏刅/span>的回收率应该>50%、/span>

    ? 在冲洗完后,柱子顶端有颜色的变化、/span>

    注意

    ? 对于新的柱子和干净或再生的柱子,顶盕/span>和凝胶表面之间的空间说明储存过程当中凝胶有所沉降,并不影响其性能。为了使

    样品的稀释影?小化,可以将顶盖向下推动<2 mm、/span>

    ? 当囊泡馏分随后被用于 PCR RT-PCR 时,建议柱子单次使用、/span>

    柱子的再甞/span>

    通常使用 20 30 mL 缓冲液清洗柱子,随后佾/span>用新缓冲液平衡柱子(如果更换环境)、/span>在一些应用中,变性的蛋白或脂质不会在再生步骤中被洗脱下来。可以通过下面的清洗步骣/span>来去除、/span>

    柱子的清洖/span>

    去除沉淀蛋白、非特异性吸附蛋白和脂蛋發/span> 10 mL 0.5 M NaOH 清洗柱子,然后用至少 30 50 mL 缓冲液冲洗柱子,并检查洗脱溶涱/span>pH、/span>

    去除强非特异性吸附蛋白、脂蛋白和脂?/span>

    20 mL 非离子型表面活性剂溶液,如 0.1 %Triton X-100 清洗柱子,然后用至少 20 30mL 缓冲液冲洗柱子、/span>

    在某些情况下,一些样品仍会残留痕量蛋白、/span>在清洗结束时再次检查蛋白含量,如果蛋白氳/span>平高于预期,再清洗一次、/span>

    柱子的消毑/span>

    消毒可以**程度减少凝胶的微生物污染。用10 mL 0.5 M NaOH 清洗柱子。然后用 30 50mL 无菌缓冲液平衡柱子,并检查洗脱溶涱/span>pH、/span>

    注意

    ? 脱气缓冲液有助于避免凝胶基质中气泡的产生。少量的气泡'10)对柱效影响?/span>小、/span>

    ? 建议使用 0.15 M 或更高离子强度的缓冲液,以避免溶质与凝胶基质之间产生不必要的离子相互作用、/span>

    ? 为了避免尺寸排阻柱的堵塞,建议过滤或低速离心生物样品以去除大颗粒物、/span>

    柱子的性能指标

    囊泡的峰值洗脰/span>

    ? 对于 500 L 的样品体积,囊泡的洗脱峰倻/span> 4.0 mL 0.5 mL、/span>

    ? 两个峰值馏分的回收率大 50 %、/span>

    ? 对于 500 L 的样品,峰值馏分通常在馏 8 9 之中。如果希望更高的纯度,可以只收集*早的峰值馏分、/span>

    通过测定 280 nm 处的紫外吸收可以得到 qEV柱的蛋白洗脱图。通过 Bradford 法可以准确测定每个馏分中蛋白的精确含量。图 1 展示了当500 L 血浆样品上样至柱上时的囊泡洗脱图、/span>每个馏分的囊泡浓度通过 qNano 测量,蛋白含量通过 280 nm 处的吸收值来测量、/span>

    囊泡的富集是十分明显,它们主要存在于馏分7? 9 中。血清蛋白的洗脱更慢一些,主要存在于馏 11 - 30 中。大 10 的馏分通常?/span>有高浓度的蛋白和低浓度的囊泡,不建议用来做分析、/span>

    EVs 的洗脱始于馏 7,馏 8 9 的浓度达?/span>**。收集越多的馏分,EVs 的总回收率趉/span>高、/span>

    2 血浆中 EVs 的回收率说明了这点。但是,收集的馏分越多,EV 的回收浓度就会越稀释、/span>见表 1、/span>

    上样体积

    上样体积越大,囊泡馏分中的囊泡纯度越低、/span> 3 展示了血清上样体积为 100 L?00 L 咋/span>2000 L 时的囊泡分布?000 L 的样品导致囊?*程度地被蛋白污染?000 L 样品中外泋/span>体的出峰延迟显而易见、/span>

    为了得到更纯 qEV,建?*的样品体积为100 L 500 L,这样囊泡会洗脱于馏 7 臲/span>9 之中、/span>

    4 展示了血清上样体积为 100 L 500 L 旵/span>的囊泡洗脱图、/span>

    囊泡的损失发生在当样品体积大 500 L 时,囊泡的洗脱峰很宽以至于一些囊泡从馏分 11中被洗脱下来。这些馏分不建议用来分析因为包含了大量的干扰蛋白、/span>

    纯化

    5 展示了馏 7 9 之间含有很少量的蛊/span>白,且越后面的馏分中蛋白含量越多、/span>

    6 展示了经 qEV 柱纯化后,EVs 相对于蛋白的纯化度。每个馏分的纯化因子(纯化前名/span>蛋白的减少比例)如图所示。馏 7 8 富集 EVs *多,也就是相对于回收的囊泡来说大部分蛋白被除去、/span>

    qEV 柱纯化过程中的稀釉/span>

    为研 qEV 纯化过程中对样本的稀释,用已?/span>浓度的聚苯乙烯纳米颗粒标准品和脂质体来模 EVs 的尺寸和组成、/span>

    稀释因子取决于哪些馏分被合并起来。起始体积为 500 L 的聚苯乙烯纳米颗粒标准品(直徃/span>众数 400 nm)的总回收率为~100%、/span>

    7 说明合并馏分 5 11 可以得到 100%的颗粒回收率。这导致稀释因子为 7,并且收集的馏分含有大量的干扰蛋白,因此不适于实际库/span>用、/span>

    1 展示了收集不同馏分的稀释因子以及回收率、/span>

    虽然可以获得 100%的回收率,但是也可以這/span>过测量每一个馏分的颗粒浓度,将浓度**皃/span>两个馏分合并起来。因此回收率与纯度之间存在折衷。当将馏 7 8 合并起来时,脂质佒/span>实验的回收率为~50 %,与聚苯乙烯纳米颗粒的结果相一致、/span>

    依据 EVs ?终浓度,可以不稀释馏分,直接 qNano 来测量每 的浓度。对亍/span>qNano,每分钟 500 1600 个颗粒是**逞/span>率。如果样品速率高于这个范围则需要进行稀释、/span>

    如果依据这个操作步骤来使 qEV 柱,并且毎/span>个馏分的体积很精确的话,EVs 会始终洗脱于馏分 7? 9,而馏 10 11 中的含量徇/span>少、/span>

    操作温度

    qEV 柱经过严格的质量控制,流速大 1 毫升/分钟?#177;0.2 毫升/分钟)。对于一些样品来说,操作温度可能会影响流速,*终影 EVs的洗脱峰形、/span>

    回收率的优化温度为在 15 C 25 C 之间 ,因此推荐的操作温度 15 - 25 C 、/span>

    大体积样品的操作 4

    对于一些生物流体来说, qEV 纯化前,可以這/span>过将样品预先浓缩来获得更多的外泌体。根?/span>所使用的样品和其它制备步骤,此操作步骤?/span>以根据需要相应修改、/span>

    1)取定量的细胞培养液,将样品离心 1500 g+/span>10 分钟,随后离 3000 g?0 分钟,取上清液。对于细菌细胞来说,则需要更高的离心力、/span>

    2)用 Merck Millipore 离心装置或等同的装置?/span>浓缩细胞培养液。Amicon Ultra 15 是一 50mL Falcon 类型装置,需要很低的离心转速,* 4000 g。这样的话每次离心需 15 分钟。这个装置可以将 15 mL 液体浓缩 300-500 L、/span>

    3)如果样品中含有不溶物, qEV 纯化剌/span>10?00 g 离心 10 分钟,去除沉淀。否则这些沉淀会对后续 TRPS 分析造成影响、/span>

    4)样品经过以上浓缩便可以按照上面第二部分来进 qEV 纯化了。样品馏分收集见 2 页、/span>

    qEV 馏分 TRPS 分析

    对于 TRPS 分析来说,Izon Science 推荐使用Izon 试剂盒,这个试剂盒可以用来预涂纳米孔并可以在整个操作过程中使用、/span>

    TRPS 的准备阶段和操作阶段中,需要过滣/span>所有试剂以避免污染或者大颗粒 TRPS 浓度测试的干扰。Izon Science 推荐使用当天新配皃/span>过膜?.22 m 注射器式滤器)试剂、/span>

    TRPS 分析 qEV 馏分时,Izon Science 推荐尅/span>馏分在初始电解液稀 1/5 1/10。优化稀釉/span>比例,使?*压力下的通过速率为约每分钞/span>500-1600 个颗粒,以避免纳米孔堵塞、/span>

    如果对于 TRPS 分析来说囊泡浓度过低,需?/span>浓缩样品(见下面)。下面部分介 qEV 馏分收集后的样品浓缩、/span>

    qEV 馏分收集后的样品浓缩

    对于小体积样品或对于 EVs 的样品来说,浒/span>缩囊泡可以使分析变得更简单。下面的方法?/span>以在 0.5 - 1 h 之内浓缩收集到的囊泡、/span>

    通过 Merck Millipore Microcon-30 装置浓缩小体积样品(需要实验室离心机达 14?00 g 的离心力)。可以将 0.5 mL 样品浓缩至大 200L。可以重复浓缩获得更多的样品(比如馏刅/span>7-9)、/span>

    术语?/span>

    色谱9/strong>一种样品中成分分离的方法。由固定相和流动相组成,样品的各组分在两相之间分配。固定相可以是固体,固体支持液体或凝胶。固定相可被填充在柱中,伸展为固定层或分布为薄膜。流动相可以是气体或液体、/span>

    柱体积:填充材料和空隙体积的体积和(可简称为床体积)、/span>

    馏分9/strong>表示从柱上收集的特定体积,对于给定体积数值恒定。也就是说,馏分 7 0.5 毫升是指收集 3.0 毫升臲/span>3.5 毫升中的 0.5 毫升、/span>

    脱气9/strong>指将溶液抽真空来“煮”掉多余的溶解气体,如将?/span>瓶抽真空、/span>

    流速:载液的体积流量,单位 mL / min、/span>

    空隙体积9/strong>柱中固定相的总体积;柱子的其余部分由凝胶材料填充。它表示 SEC 的排除体积、/span>

    囊泡馏分9/strong>囊泡出现在的馏分、/span>

    回收率:囊泡从柱子流出的量与进入柱子的量的百分比、/span>

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