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首页 > 分析仪器设备 > 植物生理生态仪?/a>>
OS-30p+快速植物胁迫测量仪
OS-30p+快速植物胁迫测量仪

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美国

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北京澳作生态仪器有限公号/a>

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    一、概?/strong>
    OS-30p+是OS-30p快速植物胁迫测量仪的升级版，是经济、轻便、精确、可靠的调制式叶绿素荧光测量系统、/div>
    二、用逓/strong>
    广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺和生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究，特别是对植物胁迫的相关研究中、/div>
    三、原琅/strong>
    OS-30p+采用的是先进的调?饱和-脉冲技术。测量时，先将叶片暗处理一段时间，然后再在饱和光强下暴露短暂的时间，测量这段时间内荧光强度随时间的变化的荧光动力学曲线。曲线的形状和重要的瞬时值可以用于指示环境胁迫对光合器官的损伤、/div>
    四、特炸/strong>
    “JIP Test OJIP９/strong>
    通过OS30p+可直接读取以下数据：O、J、I、P、t100s、t300s (或K)、tFm (或到达Fm的时?、A (曲线上方的面?、MO(或RC/ABS)、PIABS(或performance Index)、FO/FM、FV/FM及FV/FO。更重要的是，OS-30p+直接测量Fo，而不是通过计算获得。同时，它还可以直接显示设置，以及彩色的使用对数坐标轴的测量曲线，并直接读取使用*多的测量参数。设备使用的红色光化光的光强可以调节、/div>
    FV/FM 、FV/Fo
    相对于OS-30p，OS-30p+具有自动的程序，使用8个点的均值、确保仅25ms内达?*值的叶绿素荧光被测量，因此，对于陆地植物或海藻来说，饱和脉冲的持续时间问题将不存在，确保将误差控制在*小的范围内、/div>
    操作简单、测量快逞/strong>
    USB数据输出
    彩色显示屎/strong>
    坚固、耐用、适于野外使用的设讠/strong>
    手持式操作、提供野外便携箱
    五、组戏/strong>
    主机?0个暗适应叶夹、电池充电器、USB数据线、野外便携箱、光盘、/div>
    六、技术参?/strong>

    FV/FM、FV/FO９/strong>
    饱和强度 600- 6000mols ，设定从10％到100＄/div>
    饱和光源 红色点阵660 nm的LEDs
    调制光源 红色0.2?.0 umols
    检测方 调制脉冲
    检测器与过滤器 具有700-750 nm波段过滤器的Pin光电二极箠/div>
    测试时间 0.1s?.5 s，默认的饱和脉冲持续时间?s，；但是仪器软件采用取每25ms测量值的平均值的方式计算FO和FM，可作为陆生和海藻植物理想的测量工具、/div>
    调制光调 10％到100％手动调芁/div>
    测量和作图参 F O、F M、F V/F M、F V/F O
    JIP 测量９/strong>
    光化光强 6000 umols 4500umol 3500 umols 3000umols 2500 umols?000 umols 875 umols 525 umols 300 umols 200 umols 100 umols & 50 umols. 一?50nm点阵LEDs用于光化光照昍/div>
    检测方 具有700-750nm波段过滤的Pin光电二极管；使用红色脉冲调制光源，取样时间在10us ?s
    测量时间 JIP测量3 - 300s
    JIP测量参数 O t100us t300us (or K) t2ms (or J) t30ms (or I) P tF M A (area above the curve) M O(or RC/ABS) PI/ABS (or performance index) F O F M F V/F M F V/F O Fo为实测值。S M T也是实测倻 但他们只记录于数据文件中，并不再测量屏上显示。每个数据文件可存储20个曲线数据、/div>
    通用参数９/strong>
    显示 彩色图形显示
    存储 JIP测量中，每个数据文件可存?60000次测量及20个曲线；使用多个数据文件，可存储上百个曲线、/div>
    数字输出 USB端口
    电池 工作时间8小时的镍氢充电电江/div>
    尺寸 18cm7 cm 6cm.
    重量 2 lbs.
    便携 包含于标准配?/div>
    六、产?美国
    七、参考文?/strong>
    Kautsky H. Hirsch A. (1931) Neuw Versuche zur Kohlensaureassimilation. Naturwissenshaften 19 964.
    Kitajima M Butler WL (1975) Quenching of chlorophyll fluorescence and primary photochemistry in chloroplasts by dibromothymoquinone. Biochim Biophys Acta 376:105-115
    Strasser R.J Tsimilli-Michael M. and Srivastava A. (2004) - Analysis of Chlorophyll a Fluorescence Transient. From Chapter 12 “Chlorophyll a Fluorescence a Signature of
    Photosynthesis”， edited by George Papaqeorgiou and Govindjee published by Springer 2004 PO Box 17 3300 AA Dordrecht The Netherlands page 340
    Vredenberg Wim (2011) Kinetic analyses and mathematical modeling of primary photochemical and photoelectrochemical processes in plant photosystems BioSystems Contents lists available at journal
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