应用
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目的制备3Y-TZP陶瓷表面?La)掺杂TiO2抗菌薄膜观察其抗菌?为临床抗菌氧化锆陶瓷的应用提供实验基础。方法制备直?0 mm、高3 mm圆柱?Y-TZP试件,采用溶胶凝胶法制备质量分?.0%?La)掺杂的TiO2溶胶,并通过浸渍提拉法涂覆于3Y-TZP表面制成La-TiO2薄膜-3Y-TZP陶瓷,依同?不添加硝酸镧溶液制得TiO2薄膜-3Y-TZP陶瓷。扫描电镜对3Y-TZP陶瓷试件(3Y-TZP?、TiO2薄膜-3Y-TZP陶瓷试件(TiO2薄膜?、La-TiO2薄膜-3Y-TZP陶瓷试件(La-TiO2薄膜?进行表面形貌观察,并进行光催化实验、抗菌实验和细胞毒性实验?1)光催化实?La-TiO2薄膜组和TiO2薄膜?各随机取4个试?观察各组试件日光下不同时间点对亚甲基蓝的降解玆(2)抗菌实验,La-TiO2薄膜组、TiO2薄膜组和3Y-TZP?每组随机?个试?通过抑菌圈法检测其抗菌?比较各组抑菌距离;(3)细胞毒性实?La-TiO2薄膜组、TiO2薄膜组?Y-TZP?为阴性对照组)每组随机?个试?制得浸提??.064%苯酚溶液为阳性对照组?组培养L-929细胞3 d后进行形态学观察,采用MTT法测试各组细胞活力、细胞相对增殖率。结果采用浸渍提拉法可在3Y-TZP表面制备均匀分布的La-TiO2薄膜。光催化实验显示La-TiO2薄膜组在日光? h亚甲基蓝降解率达?41.2±1.5)%,高于TiO2薄膜?36.5±2.4)%,两组差异具有统计学意?t=3.321,P=0.016)。抗菌实验显?La-TiO2薄膜组抑菌距离为(0.34±0.08)mm,大于TiO2薄膜组的(0.12±0.02)mm,2组差异没有统计学意义(F=63.798,P<0.001),3Y-TZP组无明显抑菌圈。细胞毒性实验显示La-TiO2薄膜组细胞相对增殖率?89.5±1.3)%,细胞毒性评级为1?4组间差异具有统计学意?F=68.250,P<0.001)。结论镧掺杂TiO2能改善其光催化活?增强3Y-TZP陶瓷的抗菌?且无明显细胞毒性?..
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目的:探讨纳米二氧化钛(nano-TiO2)对肠道上皮IEC-6细胞中炎症因子表达及Janus激?/信号传导及转录激活因?(JAK2/STAT3)蛋白磷酸化的影响。方泔取对数生长期的IEC-6细胞,分别加入浓度?.0(对照??.0?0.0?5.0?0.0μg/mL的nano-TiO2培养24 h,采用噻唑?MTT)比色法检测各组细胞存活率;酶联免疫吸附实验(ELISA)检测各组上清液中白介素-1β(IL-1β)、白介素-6(IL-6)和肿瘤坏死因?α(TNF-α)水平;Western blot法测定各组细胞内JAK2和STAT3蛋白表达及其磷酸?p-JAK2和p-STAT3)水平;Image J软件分析蛋白条带灰度值。结枛nano-TiO2处理组IEC-6细胞增殖活性与对照组相比差异无统计学意?P>0.05)。与对照组相?在各个nano-TiO2处理浓度?IEC-6细胞IL-6和TNF-α分泌水平均显著升?P<0.05);10.0?5.0?0.0μg/mL nano-TiO2浓度处理?细胞分泌IL-1β显著增加(P<0.05)。Western blot法检测结果显?nano-TiO2处理组IEC-6细胞p-JAK2和p-STAT3蛋白表达升高,且其蛋白磷酸化水平和炎症因子表达水平呈正相关关系(rJAK2,IL-1β=0.561,P<0.05;rJAK2,IL-6=0.711,P<0.01;rJAK2,TNF-α=0.675,P<0.01;rSTAT3,IL-1β=0.782,P<0.01;rSTAT3,IL-6=0.532,P<0.05;rSTAT3,TNF-α=0.668,P<0.01)。与对照组相?15.0?0.0μg/mL nano-TiO2处理组IEC-6细胞中p-JAK2/JAK2和p-STAT3/STAT3灰度值比值明显升?P<0.05)。结讹nano-TiO2可诱导IEC-6细胞分泌炎症因子和促进JAK2/STAT3蛋白磷酸化?..
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